Эта статья входит в число избранных

Клеточное ядро

Материал из Википедии — свободной энциклопедии
Клетки HeLa, ДНК окрашена синим красителем Hoechst. Центральная и правая клетка находятся в интерфазе, и у них окрашено всё ядро. Левая клетка претерпевает митоз, ядерная оболочка во время митоза находится в разобранном состоянии, а ДНК хромосом конденсирована.

Кле́точное ядро́ (

органелла, компартмент)[1][2] эукариотической клетки[3]. В клетках прокариот ядра нет. В клетках эукариот обычно одно ядро, однако некоторые типы клеток, например, эритроциты млекопитающих
, не имеют ядра, а другие содержат несколько ядер.

В ядре заключена бо́льшая часть генетического материала клетки, представленного хромосомами, длинными линейными молекулами ДНК, связанными с белками. Генетический материал, локализованный в хромосомах, составляет ядерный геном. Ядро поддерживает целостность генетического материала, а входящие в его состав структуры управляют клеточными процессами, регулируя экспрессию генов, поэтому ядро является, по сути, контролирующим центром клетки. К основным структурам, из которых состоит ядро, относят хроматин, ядрышко, ядерную оболочку — двойную мембрану, окружающую ядро и изолирующую его от цитоплазмы, а также ядерный матрикс, который включает ядерную ламину — сеть филаментов, обеспечивающая механическую поддержку ядра, подобно цитоскелету в цитоплазме.

Поскольку ядерная оболочка непроницаема для крупных молекул, транспорт молекул через ядерную оболочку (ядерный транспорт[англ.]) обеспечивают ядерные поры. Поры пронизывают обе ядерные мембраны и формируют сквозной канал, через который малые молекулы и ионы проходят свободно, а крупные молекулы активно транспортируются с участием белков-переносчиков. Перенос через ядерные поры таких крупных молекул, как белки и РНК, необходим для экспрессии генов, поддержания хромосом и сборки рибосомных субъединиц. Хотя внутри ядра нет окружённых мембраной субкомпартментов, его внутреннее содержимое неоднородно и содержит ряд ядерных телец, которые состоят из особых белков, молекул РНК и частей хромосом. Самое известное ядерное тельце — ядрышко, в котором происходит сборка рибосомных субъединиц. После образования в ядрышке рибосомные субъединицы транспортируются в цитоплазму, где они осуществляют трансляцию мРНК.

История изучения

Старейшее известное изображение клеток и их ядер, выполненное в 1719 году Антони ван Левенгуком

Ядро стало первой из

орхидеи под микроскопом и обнаружил в клетках наружного слоя цветка непрозрачные области, которые он называл «ареолами» или «ядрами»[6]
.

Броун не делал предположений относительно функций ядра. В 1838 году

деления, и считавший, что у многих клеток может не быть ядра. Идея об образовании клеток de novo[англ.], то есть с нуля, посредством цитобластов или иначе, противоречила работам Роберта Ремака (1852) и Рудольфа Вирхова (1855), которые окончательно утвердили новую парадигму, утверждающую, что клетки могут образовываться только из клеток («Omnis cellula e cellula»). Функции ядра оставались неясными[7]
.

Между 1877 и 1878 годами

моллюсков. В 1884 году Эдуард Страсбургер показал то же самое для растений. Это проложило путь к гипотезе о том, что ядро передаёт наследственный материал. В 1873 году Август Вейсман высказал идею о равнозначности материнского и отцовского материала для наследственности. Функция ядра как носителя генетической информации стала очевидной лишь позже, после открытия митоза и открытия заново законов Менделя в начале XX столетия. На основании этих открытий была сформулирована хромосомная теория наследственности[7]
.

Структуры

Различные структуры клеточного ядра видны из-за накопления в них зелёного флуоресцентного белка

Ядро — крупнейшая органелла животных клеток

мкм, а само ядро составляет около 10 % объёма клетки[9]. Вязкая жидкость, заполняющая ядро, называется нуклеоплазмой и по химическому составу близка к цитозолю, окружающему ядро[10]
.

Ядерная оболочка и ядерные поры

Строение клеточного ядра
Поперечный разрез ядерной поры. Цифрами обозначены: 1 — ядерная оболочка, 2 — внешнее кольцо, 3 — спицы, 4 — корзина, 5 — филаменты

Ядерная оболочка состоит из двух мембран (наружной и внутренней), которые расположены параллельно на расстоянии от 10 до 50 

нм. Ядерная оболочка полностью окружает ядро, отделяя генетический материал клетки от цитоплазмы и служа барьером, предотвращающим свободную диффузию макромолекул между нуклеоплазмой и цитоплазмой. Наружная ядерная мембрана продолжается в мембрану шероховатого эндоплазматического ретикулума (ЭПР) и покрыта рибосомами. Промежуток между ядерными мембранами называется перинуклеарным пространством и продолжается в люмен ЭПР[11]
.

Ядерные поры, представляющие собой заполненные водой каналы в ядерной оболочке

осей симметрии[14]. К кольцу прикрепляется особая структура, известная как ядерная корзина, которая выдаётся в нуклеоплазму, а несколько её филаментов выдаются в цитоплазму. Обе структуры необходимы для опосредования связывания транспортных ядерных белков[8]
.

Большинство белков, субъединицы рибосом и некоторые ДНК переносятся через ядерные поры посредством семейства транспортных факторов, известных как

гистондеацетилазы, подавляющие экспрессию некоторых генов[8]
.

Ядерная ламина

Строение ядерной оболочки и ядерной ламины

В клетках животных механическую поддержку ядра обеспечивают две сети из промежуточных филаментов: ядерная ламина, представляющая собой сеть промежуточных филаментов на внутренней поверхности ядра, а также менее организованные филаменты на цитозольной поверхности ядра. Обе системы филаментов обеспечивают поддержку ядра и служат для закрепления хромосом и ядерных пор[9].

Ядерная ламина состоит в основном из белков, известных как ламины. Как и все белки, ламины синтезируются в цитоплазме и далее транспортируются внутрь ядра, где они вставляются в ядерную ламину[16][17]. Расположенные на наружной стороне ядерной оболочки белки (такие, как несприн[англ.]), связываются с элементами цитоскелета, что обеспечивает структурную поддержку ядру. Ламины также обнаруживаются в нуклеоплазме, где они образуют другую регулярную структуру, известную как нуклеоплазматическая вуаль (англ. nucleoplasmic veil)[18]; последнюю можно визуализировать с использованием флуоресцентной микроскопии. Функция вуали неизвестна, но известно, что её нет в ядрышке и она присутствует в интерфазе клеточного цикла[19]. Входящие в состав вуали ламины (такие, как LEM3) связываются с хроматином, и нарушения в их структуре подавляют транскрипцию белоккодирующих генов[20].

Как и другие белки промежуточных филаментов, мономеры ламинов содержат α-спиральный домен, используемый двумя мономерами, чтобы обвиться вокруг друг друга, образуя димер, имеющий структуру биспирали[англ.]. Два димера далее связываются своими боковыми сторонами в антипараллельной ориентации, образуя тетрамер, известный как протофиламент. Восемь тетрамеров объединяются в скрученный, похожий на верёвку филамент. Филаменты могут собираться и разбираться динамическим образом, то есть длина филамента зависит от относительных скоростей его сборки и разборки[9].

Хромосомы

Хромосомные территории 23 хромосом человека

В ядре находится большая часть генетического материала клетки, представленного линейными молекулами ДНК, которые организованы в структуры, известные как

хлоропластах[21]
.

Известно два вида хроматина. В

околоцентромерных участках хромосом[22]. В течение интерфазы хроматин каждой хромосомы занимает свою область ядра — хромосомную территорию, то есть, хроматин разных хромосом не перемешивается[23][24]. Активные гены, которые, как правило, располагаются в эухроматине, обычно располагаются на границе хромосомной территории[25]
.

Ядерные тельца

В ядре клеток млекопитающих содержится ряд дискретных субкомпартментов

липидными мембранами, и их структурная целостность целиком обеспечивается белок-белковыми и РНК-белковыми взаимодействиями. Ниже в таблице перечислены основные характеристики ядерных телец[27]
.

Ядерное тельце Функции Характерные компоненты Типичный размер (в мкм) Количество на ядро
Ядрышко Биогенез рибосом Машинерия РНК-полимеразы I[англ.], факторы процессинга рРНК и сборки рибосомных субъединиц 3—8 1—4
Спеклы Накопление и сборка факторов сплайсинга Факторы сплайсинга пре-мРНК 2—3 20—50
Стрессовые ядерные тельца Регуляция транскрипции и сплайсинга в условиях стресса HSF1[англ.], HAP 1—2 3—6
Тельце гистоновых локусов Процессинг пре-мРНК
гистонов
NPAT[англ.], FLASH, U7[англ.] мяРНП 0,2—1,2 2—4
Тельце Кахаля Биогенез, созревание и кругооборот
малых РНК
Коилин, SMN[англ.] 0,2—1,5 1—10
PML-тельце Регуляция стабильности генома, репарация ДНК, контроль транскрипции, защита от вирусов PML 0,1—1 10—30
Параспеклы Регуляция мРНК, редактирование РНК Некодирующие РНК NEAT1/MENε/β, белки PSP1, p54nrb/NONO 0,2—1 2—20
Околоядрышковый компартмент Посттранскрипционная регуляция набора РНК, синтезированных РНК-полимеразой III PTB 0,2—1 1—2

Ядрышко

Электронная микрофотография
клеточного ядра, ядрышко темно окрашено

Ядрышко — это отдельная плотная структура в ядре. Она не окружена мембраной и формируется в области расположения рДНК — тандемных повторов генов рибосомной РНК (рРНК), называемых ядрышковыми организаторами. Главная функция ядрышка — синтез рРНК и образование рибосом. Структурная целостность ядрышка зависит от его активности, и инактивация генов рРНК приводит к смешению ядрышковых структур[28].

На первой стадии образования рибосом фермент РНК-полимераза I транскрибирует рДНК и образует пре-рРНК, которая далее разрезается на 5,8S, 18S и 28S рРНК[29]. Транскрипция и посттранскрипционный процессинг рРНК происходят в ядрышке при участии малых ядрышковых РНК (snoРНК), некоторые из которых происходят из сплайсированных интронов мРНК генов, кодирующих белки, связанные с работой рибосом. Собранные рибосомные субъединицы — это самые крупные структуры, проходящие через ядерные поры[8].

При рассматривании под электронным микроскопом в ядрышке можно выделить три компонента: фибриллярные центры (ФЦ), окружающий их плотный фибриллярный компонент (ПФК) и гранулярный компонент (ГК), который, в свою очередь, окружает ПФК. Транскрипция рРНК происходит в ФЦ и на границе ФЦ и ПФК, поэтому при активации образования рибосом ФЦ становятся хорошо различимы. Разрезание и модификации рРНК происходят в ПФК, а последующие этапы образования рибосомных субъединиц, включающие загрузку рибосомных белков, происходят в ГК[29].

Тельце Кахаля

Ядра клеток мыши (синие), содержащие тельца Кахаля (зелёные точки). Изображение получено методом флуоресцентной микроскопии (коилин — маркер телец Кахаля — сращён с зелёным флуоресцентным белком)

Тельце Кахаля (ТК) — ядерное тельце, имеющееся у всех эукариот. Оно идентифицируется по наличию сигнатурного белка

посттранскрипционной модификации факторов сплайсинга. ТК присутствует в ядре во время интерфазы, но исчезает в митозе. В биогенезе ТК прослеживаются свойства самоорганизующейся структуры[30]
.

Когда внутриклеточная локализация SMN впервые изучалась методом

Drosophila melanogaster SMN колокализовался с коилином в ТК. Поэтому в общем случае SMN можно рассматривать как важный компонент ТК, а не как маркер отдельного ядерного тельца[31]
.

Тельце гистоновых локусов

Тельце гистоновых локусов (англ. histone locus body, HLB) содержит факторы, необходимые для процессинга пре-мРНК гистонов. Как и следует из названия, тельца гистоновых локусов ассоциированы с генами, кодирующими гистоны; поэтому предполагается, что в тельцах гистоновых локусов концентрируются факторы сплайсинга. Тельце гистоновых локусов присутствует в клетке во время интерфазы и исчезает с наступлением митоза. Тельце гистоновых локусов нередко рассматривается вместе с тельцем Кахаля по нескольким причинам. Во-первых, в некоторых тельцах гистоновых локусов содержится маркер телец Кахаля — коилин. Во-вторых, эти тельца нередко физически находятся рядом, поэтому между ними наблюдается некоторое взаимодействие. Наконец, очень крупные тельца Кахаля ооцитов земноводных обладают свойствами обоих телец[30].

PML-тельца

Тельца

Мыши, у которых ген PML делетирован, лишены PML-телец, однако развиваются и живут нормально, поэтому PML-тельца не выполняют незаменимых биологических функций[33]
.

Спекл

Спеклы (

Drosophila melanogaster[39]. На электронных микрофотографиях B-снурпосомы предстают прикреплёнными к тельцам Кахаля или отдельно от них. Кластеры интерхроматиновых гранул служат местами скопления факторов сплайсинга[40]
.

Параспеклы

Микрофотография клеток HeLa с меченым белком параспекл PSP1: 1. цитоплазма; 2. ядро; 3. ядрышко; 4. параспеклы

Параспеклы — это ядерные тельца неправильной формы, располагающиеся в интерхроматиновом пространстве ядра[41]. Впервые они были описаны у клеток HeLa, у которых имеется 10—30 параспеклов на ядро, но сейчас параспеклы обнаружены во всех первичных клетках человека, в клетках трансформированных линий и на срезах тканей[42]. Своё название они получили из-за своего расположения в ядре — вблизи спеклов[41].

Параспеклы — динамические структуры, которые изменяются в ответ на изменения в метаболической активности клетки. Они зависят от транскрипции[41], и в отсутствие транскрипции, проводимой РНК-полимеразой II, параспеклы исчезают, а все входящие в их состав белки (PSP1, p54nrb, PSP2, CFI(m)68 и PSF) формируют серповидный околоядрышковый кэп. Этот феномен наблюдается в ходе клеточного цикла: параспеклы присутствуют в интерфазе и всех фазах митоза, за исключением телофазы. В ходе телофазы формируются дочерние ядра, и РНК-полимераза II ничего не транскрибирует, поэтому белки параспеклов и формируют околоядрышковый кэп[42]. Параспеклы участвуют в регуляции экспрессии генов, накапливая те РНК, где есть двухцепочечные участки, которые подвергаются редактированию, а именно превращению аденозина в инозин. Благодаря этому механизму параспеклы задействованы в контроле экспрессии генов при дифференцировке, вирусной инфекции и стрессе[43].

Околоядрышковый компартмент

Околоядрышковый компартмент (ОК) — ядерное тельце неправильной формы, которое характеризуется тем, что располагается на периферии ядрышка. Несмотря на физическую связь, эти два компартмента структурно различны. Обычно ОК обнаруживают в клетках злокачественных опухолей[44]. ОК — динамическая структура, и содержит очень много РНК-связывающих белков и РНК-полимеразу III. Структурная стабильность ОК обеспечивается транскрипцией, осуществляемой РНК-полимеразой III, и наличием ключевых белков. Поскольку присутствие ОК обычно связано со злокачественностью и со способностью к метастазированию, их рассматривают как потенциальные маркеры рака и других злокачественных опухолей. Показана ассоциация ОК со специфическими локусами ДНК[45].

Стрессовые ядерные тельца

Стрессовые ядерные тельца формируются в ядре при тепловом шоке. Они образуются при непосредственном взаимодействии транскрипционного фактора теплового шока 1 (

факторов транскрипции и сплайсинга. В клетках, находящихся в нормальных (не стрессовых) условиях, стрессовые ядерные тельца обнаруживаются редко, однако их количество резко увеличивается под действием теплового шока. Стрессовые ядерные тельца найдены только в клетках человека и других приматов[46]
.

Ядерные тельца-сироты

Ядерные тельца-сироты (англ. orphan nuclear bodies) — нехроматиновые ядерные компартменты, которые исследованы гораздо хуже, чем другие хорошо охарактеризованные структуры ядра. Некоторые из них выступают как места, в которых белки модифицируются белками SUMO и/или происходит протеасомная деградация белков, помеченных убиквитином[47]. Ниже в таблице приведены характеристики известных ядерных телец-сирот[48].

Ядерное тельце Описание Типичный размер (в мкм) Количество на ядро
Кластосома Концентрирует протеасомные комплексы 20S и 19S и белки, связанные с убиквитином. Обнаруживается, главным образом, тогда, когда стимулируется активность протеасом, и разбирается при ингибировании активности протеасом. 0,2—1,2 0—3
Тельце деления (англ. cleavage body) Обогащено факторами деления CstF[англ.] и CPSF[англ.], а также белком DDX1[англ.], содержащим DEAD-бокс[англ.]. Обнаруживается в основном в S-фазе, ингибирование транскрипции на него не влияет. 0,2—1,0 1—4
Домен OPT Обогащён факторами транскрипции Oct1[англ.] и PTF. Частично колокализуется с сайтами транскрипции. Обнаруживается в основном в поздней G1-фазе, разбирается при ингибировании транскрипции. 1,0—1,5 1—3
Тельце Polycomb Обнаруживается в клетках человека и дрозофилы, обогащено белком , HPC, может быть связано с околоцентромерным гетерохроматином. 0,3—1,0 12—16
Тельце Sam68 Накапливает белок Sam68 и схожие с ним белки SLM-1 и SLM-2. Разбирается при ингибировании транскрипции. Вероятно, обогащено РНК. 0,6—1,0 2—5
Тельце SUMO Обогащено белками SUMO и SUMO-конъюгирующим ферментом Ubc9[англ.]. Концентрирует транскрипционные факторы pCREB, CBP, c-Jun[англ.]. 1—3 1—3

Функции

Ядерная оболочка защищает ДНК клетки и участвует в гораздо более сложной регуляции экспрессии генов по сравнению с прокариотической клеткой. У прокариот транскрипция и трансляция являются сопряжёнными процессами и трансляция мРНК в белок начинается ещё до того, как она будет полностью синтезирована. В клетках эукариот цитоплазма, в которой проходит трансляция, и транскрипция, протекающая в ядре, пространственно разобщены, поэтому возникает необходимость в обеспечении транспорта молекул между ядром и цитоплазмой[49].

Микрофотография транскрипции генов рРНК

Ядерная оболочка даёт ядру возможность контролировать своё содержимое и отделяет его от остальной цитоплазмы. Это имеет важное значение для регуляции процессов, протекающих по обе стороны ядерной оболочки. Когда цитоплазматический процесс должен быть как-то ограничен, то обычно его ключевой участник переносится в ядро, где он взаимодействует с факторами транскрипции и таким образом запускает подавление образования некоторых ферментов, задействованных в цитоплазматическом процессе. Например, такой регуляторный механизм имеется у

фермент гексокиназа, преобразуя молекулу глюкозы в глюкозо-6-фосфат. Когда концентрация фруктозо-6-фосфата (вещества, в ходе гликолиза образующегося из глюкозо-6-фосфата) возрастает, регуляторный белок отправляет гексокиназу в ядро[50], где она формирует транскрипционный репрессирующий комплекс, который подавляет экспрессию генов, кодирующих ферменты гликолиза[51]
.

Чтобы контролировать, какие именно гены транскрибируются, в клетке транскрипционные факторы не имеют физического доступа к ДНК, пока они не будут активированы в ходе определённого сигнального пути. Это предотвращает даже низкую экспрессию неправильных генов. В частности, в случае контролируемых NF-κB генов, которые принимают участие в воспалительном процессе, транскрипция индуцируется под действием сигнального пути, например, начинающегося со связывания сигнальной молекулы TNF-α со своим рецептором на клеточной мембране и в конце концов приводящего к активации фактора транскрипции NF-κB. Сигнал ядерной локализации, имеющийся у NF-κB, позволяет ему проходить в ядро и из него через ядерные поры; в ядре он стимулирует транскрипцию генов-мишеней[9].

Компартментализация предотвращает транскрипцию клеткой несплайсированной мРНК. Эукариотические мРНК содержат интроны, которые должны быть удалены до того, как начнётся трансляция мРНК. Сплайсинг, то есть удаление интронов, протекает в ядре, что предотвращает доступ к пре-мРНК рибосом, находящихся вне ядра. Если бы ядра не было, то рибосомы начинали бы транслировать незрелые мРНК, что привело бы к образованию неправильных белковых продуктов[52].

Поскольку транскрипция протекает в ядре, ядро содержит множество белков, непосредственно участвующих в транскрипции или регулирующих этот процесс. К этим белкам относятся

топоизомеразы, влияющие на топологию ДНК, а также разнообразные факторы транскрипции[53]
.

Ядерный транспорт

Схема ядерного транспорта и цикла ГТФазы Ran

Выход из ядра и вход в ядро крупных молекул контролируется ядерными порами. Хотя малые молекулы могут проникать в ядро без всякой регуляции, макромолекулы — такие, как белки и РНК — должны связаться с кариоферинами для транспорта в ядро (импортинами) и из ядра (экспортинами). Белки, которые должны быть транспортированы из цитоплазмы в ядро, содержат особую аминокислотную последовательность, известную как сигнал ядерной локализации, с которой связываются импортины. Аналогичным образом белки, которые должны выйти из ядра, содержат

ГДФ, в зависимости от своего местонахождения (в ядре или в цитоплазме). В ядре взаимодействие Ran-ГТФ с импортином вызывает конформационные изменения в последнем, так что он отделяется от переносимого груза. Образованный комплекс Ran-ГТФ и импортина транспортируется в цитоплазму, где белок RanBP отделяет Ran-ГТФ от импортина. Отделение от импортина позволяет белку GAP[англ.] связаться с Ran-ГТФ и катализировать гидролиз ГТФ до ГДФ. Далее комплекс Ran-GDP распознаётся белком NUTF2[англ.], который возвращает его в нуклеоплазму. В ядре белок GEF[англ.] заменяет ГДФ на ГТФ, образуя Ran-ГТФ и замыкая цикл[54]
.

Ядерный экспорт осуществляется похожим образом. В ядре экспортин связывается с белком-грузом и Ran-ГТФ и переносится через ядерную пору в цитоплазму, где комплекс диссоциирует. Ran-ГТФ гидролизует ГТФ до ГДФ под действием GAP, и комплекс Ran-ГДФ переносится в ядро, где ГДФ заменяется на ГТФ[15]. Для транспорта через ядерную оболочку зрелых мРНК и тРНК также существуют специальные белки[52][55].

Сборка и разборка

В течение жизни клетки ядро может быть разобрано (при делении клетки или при

киназами, как циклинзависимая протеинкиназа 1[англ.]. Сборка ядерной ламины в дочерних ядрах начинается после дефосфорилирования ламинов[56]
.

Апоптоз — это контролируемый процесс разрушения клеточных компонентов, приводящего к гибели клетки. Перемены, связанные с апоптозом, происходят непосредственно с ядром и его содержимым. К их числу относится конденсация хроматина, а также дезинтеграция ядерной оболочки и ядерной ламины. Разрушение сети ламинов происходит с участием апоптотических

мутантные ламины, устойчивые к действию каспаз, при апоптозе не утрачивают целостность ядра, поэтому ламины играют ключевую роль в начале изменений, которое претерпевает ядро при апоптозе[18]. Кроме того, ингибирование сборки ламинов в сеть запускает апоптоз[57]
.

Особенности ядер у различных эукариот

Размеры, формы и морфология ядер эукариот изменяются в самых широких пределах. Если у пироплазмид и лейшманий диаметр ядра составляет 1—3 мкм, то у некоторых радиолярий ядра в диаметре достигают 400 мкм и даже 1 мм. Как правило, форма ядра у большинства эукариот близка к сферической, но иногда она способна принимать довольно причудливые очертания (это, в частности, относится к макронуклеусам инфузорий). Хотя у всех эукариот оболочка ядра состоит из двух мембран, число пор в ней у различных видов сильно варьирует, причём иногда к ней (как снаружи, так и изнутри) могут примыкать дополнительные слои; например, у многих свободноживущих амёб к внутренней стороне оболочки прилегает фиброзный слой с ячеистым строением, который значительно превосходит ядерную оболочку по толщине, а у радиолярий с внешней стороны оболочки располагаются дополнительные фибриллярные слои[58].

Значительным своеобразием отличается организация ядра у

гистонов. Такой тип ядра получил название динокарион. При этом количество ДНК в динокарионе в десятки и сотни раз превосходит количество ДНК, приходящееся на клетку у представителей других групп эукариот[59]. Впрочем, некоторые динофлагелляты (Noctiluca, Oodinium[англ.]) имеют обычные эукариотические ядра[60]; у других представителей типа в вегетативных клетках ядра обычные, а динокарион присутствует на других стадиях клеточного цикла (например, в гаметах)[59]
.

Безъядерные эритроциты млекопитающих

Клетки протистов обладают по крайней мере одним ядром

мутагенов в кровь могут выпускаться незрелые эритроциты, содержащие микроядра[63][64]
.

Большинство протистов имеет только одно ядро; у протистов, для которых характерен сложный жизненный цикл (например, у представителей типа апикомплексы (Apicomplexa) встречаются одноядерные и многоядерные стадии[65].

Многоядерные клетки протистов

В ряде групп протистов клетки имеют несколько ядер на протяжении всей жизни; при этом многоядерные формы протистов способны достигать крупных размеров — порядка нескольких сантиметров в диаметре (в исключительных случаях — до метра и более)

Giardia — имеют два функционально эквивалентных ядра, которые наследуются независимо в ходе митоза[67][68]. У представителей рода Stephanopogon[англ.] (тип Percolozoa[англ.][69]) клетка содержит от 2 до 16 идентичных ядер. У жгутиконосцев из класса опалины (Opalinea) клетки также содержат несколько одинаковых ядер; их число существенно различается на различных стадиях жизненного цикла опалин. Много ядер у некоторых представителей отряда Oxymonadida[англ.], причём количеству ядер соответствует и количество имеющихся в клетке мастигонтных комплексов[англ.][70]
.

Макронуклеус и микронуклеус у инфузории Paramecium caudatum (показаны коричневым цветом)

В составе

эндосимбиоза (у Cryptophyta происходила инкорпорация красной, а у Chlorarachnea — зелёной водоросли)[71]
.

У

микронуклеус и вегетативный макронуклеус. При этом настоящий ядерный дуализм, при котором клетка содержит один или несколько мелких микронуклеусов и один или несколько крупных макронуклеусов, характерен для инфузорий и для определённых стадий (агамонтов) некоторых фораминифер (например, у Rotaliella heterokaryotica)[65]; вообще же клетки или плазмодии фораминифер содержат от одного до нескольких тысяч ядер[72]. В клетках инфузорий может быть как один, так и несколько микронуклеусов; это справедливо и для макронуклеусов. Микронуклеусы диплоидны, и именно в них происходит генетическая рекомбинация. Для макронуклеусов же характерен высокий уровень амплификации генов (так, у Paramecium tetraurelia уровень плоидности макронуклеуса составляет 1000—2000); впрочем, у инфузорий из класса Karyorelictea[англ.] микро- и макронуклеусы содержат почти одинаковый диплоидный набор ДНК. Макронуклеусы ответственны за клеточный метаболизм и являются местом синтеза РНК. В ходе деления клетки старые макронуклеусы обычно дегенерируют, новые же развиваются путём модификации микронуклеусов[73]. Дифференцировка ядер на генеративные и вегетативные имеет место также у миксоспоридий (Myxosporea) и большинства акантарий (Acantharea); у последних такая дифференцировка происходит перед инцистированием: одно полиплоидное ядро даёт начало сначала вегетативным ядрам, а затем — генеративным, число которых в клетке в результате неоднократных делений достигает сотен[74][75]
.

Многоядерные клетки высших эукариот

Распространено и наличие двух ядер в клетках

дикарион, или диплокарион[77]. Встречающиеся у многих грибов несептированные гифы также, по существу, представляют собой гигантские многоядерные клетки[78]
.

У

пыльцевых зёрен питательными веществами[80]
.

У человека и других

моноцита с образованием гигантских многоядерных клеток происходит при воспалении[82], а также может говорить об образовании опухоли[83]
.

Происхождение ядра

Клеточное ядро является важнейшей чертой эукариотических организмов, отличающей их от бактерий и архей. Несмотря на значительный прогресс в цитологии и молекулярной биологии, происхождение ядра не выяснено и является предметом научных споров. Выдвинуто 4 основных гипотезы происхождения клеточного ядра, но ни одна из них не получила широкой поддержки[84].

Гипотеза, известная как синтропная модель, предполагает, что ядро возникло в результате симбиотических взаимоотношений между археей и бактерией (ни археи, ни бактерии не имеют оформленных клеточных ядер). По этой гипотезе, симбиоз возник, когда древняя архея (сходная с современными

гистонов). Кроме того, миксобактерии быстро передвигаются, могут образовывать многоклеточные структуры и имеют киназы и G-белки, близкие к эукариотическим[86]
.

планктомицетов
. N — нуклеоид, NE — оболочка нуклеоида

Согласно второй гипотезе, прото-эукариотическая клетка эволюционировала из бактерии без стадии эндосимбиоза. Доказательством модели является существование современных бактерий группы

Planctomycetes, которые имеют ядерные структуры с примитивными порами и другие клеточные компартменты, ограниченные мембранами (ничего похожего у других прокариот не обнаружено)[87]
.

Согласно гипотезе вирусного эукариогенеза, окружённое мембраной ядро, как и другие эукариотические элементы, возникли вследствие инфекции прокариотической клетки вирусом. Это предположение основывается на наличии общих черт у эукариот и некоторых вирусов, а именно генома из линейных цепей ДНК, кэпирования мРНК и тесного связывания генома с белками (гистоны эукариот принимаются аналогами вирусных ДНК-связывающих белков). По одной версии, ядро возникло при фагоцитировании (поглощении) клеткой большого ДНК-содержащего вируса[88]. По другой версии, эукариоты произошли от древних архей, инфицированных поксвирусами. Эта гипотеза основана на сходстве ДНК-полимеразы современных поксвирусов и эукариот[89][90]. Также предполагается, что нерешённый вопрос о происхождении пола и полового размножения может быть связан с вирусным эукариогенезом[91].

Четвёртая, самая новая гипотеза, названная экзомембранной гипотезой, утверждает, что ядро произошло от одиночной клетки, которая в процессе эволюции выработала вторую внешнюю клеточную мембрану; первичная клеточная мембрана после этого превратилась в ядерную мембрану, и в ней образовалась сложная система поровых структур (ядерных пор) для транспорта клеточных компонентов, синтезированных внутри ядра[92].

Клиническое значение

Нормальная ядерная ламина (a и b) и мутантная ядерная ламина от пациента с прогерией (c и d). Обратите внимание на неправильную форму ядер у больного прогерией[93]

Мутации, затрагивающие белки различных компонентов ядра, нередко приводят к заболеваниям. Так, мутации, которые затрагивают ламины, приводящие к нарушениям в сборке филаментов ядерной ламины, лежат в основе группы редких наследственных заболеваний, известных как ламинопатии[англ.]. Наиболее изучена группа ламинопатий, выступающих под общим названием прогерия. У больных прогерией наблюдается преждевременное старение, однако биохимические основы такого фенотипа неясны[94]
.

Наличие в крови антител к некоторым белкам хроматина, например, нуклеосомным комплексам, обусловливает аутоиммунные заболевания — такие, как системная красная волчанка[95]. Данные антитела известны под названием антиядерных антител[англ.], и их наличие также может быть связано с рассеянным склерозом как частью общего расстройства иммунной системы. Как и в случае прогерии, биохимическая подоплёка таких симптомов неясна[96].

Мутации в белках ядрышка часто приводят к различным раковым заболеваниям[97]. Если в ядрышке проявляются дефекты образования рибосом, то наблюдаются заболевания, известные как рибосомопатии[англ.][98]. Нарушения в других ядерных тельцах тоже могут приводить к болезням. Так, присутствие в ядре маленьких палочек часто выявляется в случаях немалиновой миопатии[англ.]. Это заболевание обусловлено мутациями в гене актина, и сами палочки состоят из мутантного актина и других белков цитоскелета[99].

В норме ядерная оболочка служит барьером, который препятствует проникновению в ядро различных вирусов. Некоторым вирусам для репликации и/или сборки необходимы белки, находящиеся внутри ядра. Сборка и репликация ДНК-содержащих вирусов (это, например, герпесвирусы) происходит внутри ядра, и вирионы покидают его, отпочковываясь от внутренней ядерной мембраны. Этот процесс сопровождается разборкой ядерной ламины с обращённой к ядру стороны внутренней ядерной мембраны[18].

Примечания

  1. Клетки / под ред. Б. Льюина и др. — М.: Бином, 2011. — С. 21—22. — ISBN 978-5-94774-794-2.
  2. Сов. энциклопедия
    , 1986. — С. 430. — 831 с. — 100 000 экз.
  3. 1 2 Кассимерис, Лингаппа, Плоппер, 2016, с. 406.
  4. Leeuwenhoek, A. van. . Opera Omnia, seu Arcana Naturae ope exactissimorum Microscopiorum detecta, experimentis variis comprobata, Epistolis ad varios illustres viros. J. Arnold et Delphis, A. Beman, Lugdinum Batavorum 1719—1730. Cited after: Dieter Gerlach, Geschichte der Mikroskopie. — Frankfurt am Main: Verlag Harri Deutsch, 2009. — ISBN 978-3-8171-1781-9.
  5. Harris H. . The Birth of the Cell. — New Haven: Yale University Press, 1999. — xii + 212 p. — ISBN 0-300-07384-4.
  6. Brown, Robert.  On the Organs and Mode of Fecundation of Orchidex and Asclepiadea // Miscellaneous Botanical Works, I. — 1866. — P. 511—514.
  7. 1 2 Cremer, Thomas. . Von der Zellenlehre zur Chromosomentheorie. — Berlin e. a.: Springer Verlag, 1985. — 384 S. — (Veröffentlichungen aus der Forschungsstelle für Theoretische Pathologie der Heidelberger Akademie der Wissenschaften). — ISBN 3-540-13987-7.
  8. 1 2 3 4 5 6 Lodish H., Berk A., Matsudaira P., Kaiser C. A., Krieger M., Scott M. P., Zipursky S. L., Darnell J. . Molecular Cell Biology. 5th edition. — N. Y.: W. H. Freeman, 2004. — ISBN 0-7167-2672-6.
  9. 1 2 3 4 Bruce Alberts, Alexander Johnson, Julian Lewis, Martin Raff, Keith Roberts, Peter Walter. . Molecular Biology of the Cell. 4th edition. — Garland Science, 2002. — Chapter 4, p. 191–234.
  10. Clegg J. S.  Properties and Metabolism of the Aqueous Cytoplasm and its Boundaries // The American Journal of Physiology. — 1984. — Vol. 246, no. 2 (Pt. 2). — P. 133—151. — PMID 6364846. [исправить]
  11. ]
  12. Кассимерис, Лингаппа, Плоппер, 2016, с. 418.
  13. Rhoades R., Pflanzer R. G. . Human Physiology. 3rd edition. — Fort Worth: Saunders College Publishing, 1996. — xxx + 978 p. — ISBN 0-030-05159-2.
  14. Shulga N., Mosammaparast N., Wozniak R., Goldfarb D. S.  Yeast Nucleoporins Involved in Passive Nuclear Envelope Permeability // The Journal of Cell Biology. — 2000. — Vol. 149, no. 5. — P. 1027—1038. — PMID 10831607. [исправить]
  15. ]
  16. ]
  17. Goldman A. E., Moir R. D., Montag-Lowy M., Stewart M., Goldman R. D.  Pathway of Incorporation of Microinjected Lamin A into the Nuclear Envelope // The Journal of Cell Biology. — 1992. — Vol. 119, no. 4. — P. 725—735. — PMID 1429833. [исправить]
  18. ]
  19. Moir R. D., Yoon M., Khuon S., Goldman R. D.  Nuclear Lamins A and B1: Different Pathways of Assembly during Nuclear Envelope Formation in Living Cells // The Journal of Cell Biology. — 2000. — Vol. 151, no. 6. — P. 1155—1168. — PMID 11121432. [исправить]
  20. ]
  21. ]
  22. ]
  23. Schardin M., Cremer T., Hager H. D., Lang M.  Specific Staining of Human Chromosomes in Chinese hamster x man Hybrid Cell Lines Demonstrates Interphase Chromosome Territories // Human Genetics. — 1985. — Vol. 71, no. 4. — P. 281—287. — PMID 2416668. [исправить]
  24. Lamond A. I., Earnshaw W. C.  Structure and Function in the Nucleus // Science. — 1998. — Vol. 280, no. 5363. — P. 547—553. — PMID 9554838. [исправить]
  25. Kurz A., Lampel S., Nickolenko J. E., Bradl J., Benner A., Zirbel R. M., Cremer T., Lichter P.  Active and Inactive Genes Localize Preferentially in the Periphery of Chromosome Territories // The Journal of Cell Biology. — 1996. — Vol. 135, no. 5. — P. 1195—1205. — PMID 8947544. [исправить]
  26. Кассимерис, Лингаппа, Плоппер, 2016, с. 410.
  27. The Nucleus, 2011, p. 311, 313.
  28. ]
  29. 1 2 Lamond A. I., Sleeman J. E.  Nuclear Substructure and Dynamics // Current Biology. — 2003. — Vol. 13, no. 21. — P. 825—828. — PMID 14588256. [исправить]
  30. 1 2 The Nucleus, 2011, p. 235.
  31. The Nucleus, 2011, p. 239.
  32. Dundr M., Misteli T.  Functional Architecture in the Cell Nucleus // The Biochemical Journal. — 2001. — Vol. 356, Pt. 2. — P. 297—310. — PMID 11368755. [исправить]
  33. ]
  34. ]
  35. Tripathi K., Parnaik V. K.  Differential Dynamics of Splicing Factor SC35 During the Cell Cycle // Journal of Biosciences. — 2008. — Vol. 33, no. 3. — P. 345—354. — PMID 19005234. [исправить]
  36. Tripathi K., Parnaik V. K.  Differential Dynamics of Splicing Factor SC35 During the Cell Cycle // Journal of Biosciences. — 2008. — Vol. 33, no. 3. — P. 345—354. — PMID 19005234. [исправить]
  37. ]
  38. Cellular component — Nucleus speckle. // UniProt: UniProtKB. Дата обращения: 30 августа 2013. Архивировано 13 ноября 2012 года.
  39. Gall J. G., Bellini M., Wu Zheng’an, Murphy C.  Assembly of the Nuclear Transcription and Processing Machinery: Cajal Bodies (Coiled Bodies) and Transcriptosomes // Molecular Biology of the Cell. — 1999. — Vol. 10, no. 12. — P. 4385—4402. — PMID 10588665. [исправить]
  40. ]
  41. 1 2 3 Fox A. H., Lam Yun Wah, Leung A. K. L., Lyon C. E., Andersen J., Mann M., Lamond A. I.  Paraspeckles: a Novel Nuclear Domain // Current Biology. — 2002. — Vol. 12, no. 1. — P. 13—25. — PMID 11790299. [исправить]
  42. ]
  43. The Nucleus, 2011, p. 274.
  44. ]
  45. The Nucleus, 2011, p. 264.
  46. The Nucleus, 2011, p. 288.
  47. The Nucleus, 2011, p. 300.
  48. The Nucleus, 2011, p. 301.
  49. Кассимерис Л., Лингаппа В. Р., Плоппер Д. . Клетки по Льюину. — М.: Лаборатория знаний, 2016. — С. 407. — 1056 с. — ISBN 978-5-906828-23-1.
  50. Lehninger A. L., Nelson D. L., Cox M. M. . Lehninger Principles of Biochemistry. 3rd edition. — New York: Worth Publishers, 2000. — xxix + 1152 p.
  51. ]
  52. ]
  53. Nicolini C. A. . Genome Structure and Function: From Chromosomes Characterization to Genes Technology. — Springer, 1997. — ISBN 0-7923-4565-7.
  54. Izaurralde E., Adam S.  Transport of Macromolecules Between the Nucleus and the Cytoplasm // RNA (New York, N.Y.). — 1998. — Vol. 4, no. 4. — P. 351—364. — PMID 9630243. [исправить]
  55. ]
  56. Boulikas T.  Phosphorylation of Transcription Factors and Control of The Cell Cycle // Critical Reviews in Eukaryotic Gene Expression. — 1995. — Vol. 5, no. 1. — P. 1—77. — PMID 7549180. [исправить]
  57. Steen R. L., Collas P.  Mistargeting of B-type Lamins at the End of Mitosis: Implications on Cell Survival and Regulation of Lamins A/C Expression // The Journal of Cell Biology. — 2001. — Vol. 153, no. 3. — P. 621—626. — PMID 11331311. [исправить]
  58. Протисты: руководство по зоологии. Ч. 1 / Гл. ред. А. Ф. Алимов. — СПб.: Наука, 2000. — 679 с. — ISBN 5-02-025864-4. — С. 157.
  59. 1 2 Белякова Г. А., Дьяков Ю. Т., Тарасов К. Л. . Ботаника: в 4 т. Т. 2. — М.: Издат. центр «Академия», 2006. — 320 с. — ISBN 978-5-7695-2750-1. — С. 145—146.
  60. Хаусман и др., 2010, с. 121.
  61. Хаусман и др., 2010, с. 34.
  62. Skutelsky E., Danon D.  Comparative study of nuclear expulsion from the late erythroblast and cytokinesis // Experimental Cell Research. — 1970. — Vol. 60, no. 3. — P. 427—436. — PMID 5422968. [исправить]
  63. Torous D. K., Dertinger S. D., Hall N. E., Tometsko C. R.  Enumeration of micronucleated reticulocytes in rat peripheral blood: a flow cytometric study // Mutation Research. — 2000. — Vol. 465, no. 1-2. — P. 91—99. — PMID 10708974. [исправить]
  64. Hutter K. J., Stöhr M.  Rapid detection of mutagen induced micronucleated erythrocytes by flow cytometry // Histochemistry. — 1982. — Vol. 75, no. 3. — P. 353—362. — PMID 7141888. [исправить]
  65. 1 2 Хаусман и др., 2010, с. 336.
  66. Хаусман и др., 2010, с. 34, 42.
  67. Adam R. D.  The biology of Giardia spp. // Microbiological Reviews. — 1991. — Vol. 55, no. 4. — P. 706—732. — PMID 1779932. [исправить]
  68. ]
  69. ]
  70. Хаусман и др., 2010, с. 70, 91, 97—100.
  71. Хаусман и др., 2010, с. 95, 181.
  72. Хаусман и др., 2010, с. 34, 183, 336.
  73. Хаусман и др., 2010, с. 150—151, 155, 345.
  74. Proc. Nat. Acad. Sci. USA. — 1997. — Vol. 94, no. 21. — P. 11411—11416. — PMID 9326623. [исправить
    ]
  75. Карпов С. А. Строение клетки протистов. — СПб. : ТЕССА, 2001. — С. 257. — 384 с. — ISBN 5-94086-010-9.
  76. ]
  77. Хаусман и др., 2010, с. 34, 216.
  78. ]
  79. ]
  80. ]
  81. Rita L. Lees R. L., Heersche J. N. M.  Differences in regulation of pHi in large (≥10 nuclei) and small (≤5 nuclei) osteoclasts // American Journal of Physiology — Cell Physiology. — 2000. — Vol. 279, no. 3. — P. C751—C761. Архивировано 30 марта 2017 года.
  82. McInnes A., Rennick D. M. Interleukin 4 induces cultured monocytes/macrophages to form giant multinucleated cells // The Journal of Experimental Medicine. — 1988. — Vol. 167, no. 2. — P. 598—611. — PMID 3258008. [исправить]
  83. ]
  84. ]
  85. Margulis L. . Symbiosis in Cell Evolution. — San Francisco: W. H. Freeman & Company, 1981. — 419 p. — ISBN 0-7167-1256-3. — P. 206—227.
  86. ]
  87. ]
  88. ]
  89. ]
  90. Villarreal L. P., DeFilippis V. R.  A Hypothesis for DNA Viruses as the Origin of Eukaryotic Replication Proteins // Journal of Virology. — 2000. — Vol. 74, no. 15. — P. 7079—7084. — PMID 10888648. [исправить]
  91. ]
  92. ]
  93. ]
  94. ]
  95. ]
  96. Barned S., Goodman A. D., Mattson D. H.  Frequency of Anti-Nuclear Antibodies in Multiple Sclerosis // Neurology. — 1995. — Vol. 45, no. 2. — P. 384—385. — PMID 7854544. [исправить]
  97. Proteins of the Nucleolus, 2013, p. 292.
  98. The Nucleolus, 2011, p. 168.
  99. ]

Литература